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第一篇文章截图

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在基因编辑领域,CRISPR-Cas9系统无疑是过去十年最耀眼的明星。但你是否想过,这种强大的“基因剪刀”从何而来?它的“祖先”是谁?
近日,由诺贝尔奖得主教授领衔的研究团队,在预印本平台bioRxiv上接连发布两篇突破性研究,不仅解答了这个问题,更发现了一种比CRISPR更古老、工作原理截然不同的全新RNA引导系统。这项发现可能将从根本上改变我们对“可编程生命工具”演进历程的认知。
在第一篇论文《一种先于CRISPR的、用于RNA引导DNA识别的非连续编码》中,研究团队报告了一项惊人发现:一种名为 VIPR的系统。
1. 它是什么?
VIPR,全称“病毒干扰可编程重复序列”(Viral Interference Programmable Repeat)。与CRISPR系统类似,它也由一种蛋白质(Vipr蛋白)和一段向导RNA(vrRNA)组成。
2. 它有多“古老”?
关键证据表明,VIPR系统比所有已知的CRISPR系统都要古老:
结构更简单:Vipr蛋白是CRISPR系统中关键蛋白(RAMPs)的“原始祖先”,结构更精简。
起源不同:CRISPR主要存在于细菌等宿主体内,用于防御病毒(噬菌体)。而VIPR系统主要编码在噬菌体(病毒)自身的基因组中。这意味着,最初的“RNA引导”战争,可能始于病毒与病毒之间的内部厮杀,细菌后来“拿来主义”,将其改造为自己的免疫系统。
3. 它的工作原理有多独特?—— “间断编码”与“一碱基跳过”规则
这是VIPR最颠覆性的发现。所有已知的RNA引导系统(包括CRISPR、RNAi等),都依赖于向导RNA与目标DNA/RNA的连续碱基配对。
但VIPR的向导RNA(vrRNA)结构奇特,由9-16个“YNNGG”重复单元串联而成。其中“GGY”是固定模式,“NN”是两个可变碱基。
研究发现,Vipr蛋白在结合vrRNA时,会巧妙地“屏蔽”掉所有固定的“GGY”碱基,只将“NN”这两个可变碱基暴露出来,用于识别目标DNA。而在目标DNA上,与“NN”配对的碱基之间,总是间隔一个不被识别的“跳过碱基”。
这就是VIPR的“非连续编码”和“一碱基跳过”规则。你可以把它想象成摩尔斯电码,重要的信息(NN)之间有固定的间隔(跳过碱基),只有破译这个规则,才能读懂完整信息。
图示:VIPR的“一碱基跳过”识别规则

图释:VIPR系统通过“一碱基跳过”规则实现非连续DNA识别。vrRNA上的可变“NN”二核苷酸(粉色)
与DNA目标链(黄色)上的对应碱基配对,而固定的“GGY”(灰色)和DNA上的“跳过碱基”(橙色)被蛋白隔离,不参与配对。
4. 它能做什么?
研究证实,VIPR系统可以像CRISPRi一样,高效地进行可编程的转录抑制(让基因沉默)。通过重新设计vrRNA上的“NN”序列,就能精准靶向并关闭特定基因。它在实验室中成功抵御了噬菌体感染,并能诱导潜伏的噬菌体进入裂解状态,展示了其作为新型抗病毒工具的潜力。
如果说第一篇论文发现了“是什么”,那么紧接着的第二篇论文《三链体形成驱动VIPR非连续RNA引导的DNA识别》则用高清“照片”揭示了“为什么”和“怎么样”。
研究团队利用冷冻电镜技术,解析了VIPR复合物在不同工作状态下的21个高分辨率结构,完整呈现了其从组装、搜索到锁定DNA的全过程,画面令人惊叹。
1. 精巧的组装:蛋白沿RNA形成螺旋丝
Vipr蛋白会像串珠一样,沿着vrRNA组装成一条右手螺旋丝。每个蛋白“扣住”一个“GGY”固定基序,从而将相邻的“NN”可变碱基准确摆放到待命位置。
图示:VIPR蛋白沿vrRNA组装成螺旋丝

图释:Vipr蛋白(不同颜色)在vrRNA(粉色)上寡聚化,形成右手螺旋丝状结构,为DNA识别做好准备。
2. 革命性的工作机制:DNA“三链体”与链交换
当VIPR螺旋丝遇到目标DNA双螺旋时,会发生一系列精妙的构象变化:
捕捉与变形:VIPR丝会“拥抱”DNA双螺旋,使其变形并纳入自身的螺旋轨道,初步形成一个 “RNA-双链DNA三链体” 中间态。此时,DNA还尚未打开。
链交换:在VIPR蛋白的固定下,其中一条DNA链(非目标链)保持不动,另一条链(目标链)像“交接”一样,局部旋转脱离同伴,转而与vrRNA上的“NN”碱基进行间断配对。
最终形态——R-loop三链体:最终,VIPR核心形成了一个前所未有的三链核酸结构:vrRNA与目标DNA链形成间断配对的杂合链(R-loop),而原先与之配对的非目标DNA链并未被推开,而是像第三根线一样,缠绕在这个杂合链的沟槽中,形成一个稳固的“R-loop三链体”。
图示:VIPR工作最终态——R-loop三链体

图释:VIPR识别DNA的最终状态是形成一个“R-loop三链体”。vrRNA(粉色)与目标DNA链(黄色)通过“一碱基跳过”规则配对,而被置换出的非目标DNA链(蓝色)并未远离,而是缠绕在周围,三者被Vipr蛋白(灰色框架)稳定地固定在一起。
3. 为何如此重要?
这种“三链体驱动”的机制与CRISPR等系统“入侵并推开一条DNA链”的机制截然不同。它可能解释了为何VIPR仅凭间断的碱基配对就能稳定结合DNA——蛋白搭建的“三链体脚手架”提供了额外的稳定性。这为我们理解核酸相互作用和设计新工具提供了全新的物理蓝图。
这两项研究共同描绘了一幅激动人心的图景:
起源重写:适应性免疫的根源可能始于病毒之间的古老军备竞赛。VIPR这样的系统被噬菌体用于互相攻击。后来,细菌细胞“劫持”了这套系统,并通过添加新的功能模块(如用于获得免疫记忆的Cas1蛋白),将其改造为今天我们熟知的CRISPR适应性免疫系统。
新工具库:VIPR系统本身就是一个极简、可编程的强大平台。它仅需一个约20kD的小蛋白和一段不到100个核苷酸的RNA,无需PAM序列限制,即可靶向双链DNA的任何一条链。这为开发新型基因沉默、成像甚至编辑工具提供了全新的起点。
范式突破:“非连续编码”和“三链体驱动”的机制,极大地拓展了我们对“可编程”的理解。自然界在CRISPR之外,早已找到了另一种优雅的解决方案。这提示我们,生命体中可能还隐藏着更多未知的RNA引导系统等待发现。
这项研究不仅追溯了基因编辑技术的“家族史”,更从自然宝库中挖掘出了一件功能独特、潜力巨大的“新兵器”。从古老的病毒战场到现代的实验室,对生命基本规律的每一次深刻洞察,都在为我们打开一扇操控生命、造福健康的新大门。
由于两篇文章目前均为bioRxiv预印本,尚未经过正式同行评议并发表在期刊上,其引用格式如下:
第一篇(发现VIPR系统):
Yoon, P. H., Loi, K., Zhang, Z., Docter, T. A., Lopez, S. C., Langeberg, C. J., ur-Rehman, M. M., Vohra, K., Zhou, Z., Shi, H., Boger, R., Wang, P. Y., Adler, B. A., Brohawn, S. G., & Doudna, J. A. (2026). A Noncontiguous Code for RNA-Guided DNA Recognition PrecededCRISPR. bioRxiv. https://doi.org/10.64898/2026.04.26.720920
第二篇(解析VIPR结构机制):
Yoon, P. H., Docter, T. A., Zhang, Z., Loi, K., Valentin-Alvarado, L. E., Brohawn, S. G., & Doudna, J. A. (2026). Triplex formation drives noncontiguous VIPR RNA-guided DNA recognition. bioRxiv. https://doi.org/10.64898/2026.04.26.720927
请注意: 预印本内容可能在未来经同行评议后,在学术期刊上正式发表,届时引用应以期刊版本为准。