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基因编辑领域迎来新突破:科学家从宏基因组中挖掘出一款超紧凑型Cas12f编辑器,不仅解决了大尺寸Cas9难以装入AAV载体的难题,更通过结构解析与工程化改造,实现了在哺乳动物细胞中的高效、广谱编辑。
自CRISPR基因编辑技术问世以来,递送效率始终是临床应用的一大瓶颈。传统的SpCas9(约1368个氨基酸)虽然高效,但体积庞大,难以塞进单载体的腺相关病毒(AAV)中,限制了其在体内的治疗潜力。
2026年4月13日,德克萨斯大学奥斯汀分校David W. Taylor团队联合Metagenomi公司在《Nature Structural & Molecular Biology》发表重磅研究。他们从宏基因组数据中挖掘并鉴定出一种名为Al3Cas12f的新型微型核酸酶。

Al3Cas12f在人类细胞中的编辑效率表现优异,优于OsCas12f,甚至在某些位点超过LbCas12a。
这项研究不仅解析了Al3Cas12f及其同源物OsCas12f、RhCas12f的高分辨率冷冻电镜结构,还揭示了其独特的“双亚基协同”工作机制,并通过结构引导的工程化改造,开发出活性显著提升的变体Al3Cas12f-RKK。
研究团队通过比较三种高活性Cas12f同源物的结构与生化特性,发现了Al3Cas12f高效编辑的秘诀:
与OsCas12f和RhCas12f相比,Al3Cas12f的识别(REC)结构域更大,多出两段α螺旋(α2和α3)。这些延伸的螺旋像中国传统建筑中的“榫卯”一样,形成了极其稳固的二聚体界面(Mortise-and-tenon joint),大大增强了复合体的稳定性。

左:Al3Cas12f、OsCas12f和RhCas12f的三元复合体结构对比;右:Al3Cas12f独特的二聚体界面相互作用。
Al3Cas12f的gRNA支架结构更为紧凑。研究发现,其gRNA的Stem 2区域能与REC结构域发生特异性接触,这种天然的优化结构省去了繁琐的人工改造步骤,使其在细胞中即具备高活性。
通过捕捉不同的中间态,研究人员发现:
OsCas12f需要先让RuvC.2结构域对接,才能形成完整的R-loop。
Al3Cas12f则不同,它可以在RuvC.2对接之前就形成完整的R-loop,这种“先形成后切割”的机制使其反应动力学更快,不易陷入非生产性状态。
尽管野生型Al3Cas12f已经表现出色,但在某些基因位点(如SOD1)上仍存在效率不足的问题。为了解决这种“位点依赖性”,研究团队基于结构洞察进行了定点突变改造。
他们重点增加了与DNA底物或gRNA相互作用的残基的正电荷。最终,一个名为RKK(K79R; M190K; E222K)的三突变体脱颖而出。

经过工程化改造的Al3Cas12f-RKK变体在多个基因组位点上表现出显著高于野生型的编辑效率。
实验结果令人振奋:
在测试的8个基因组位点中,Al3Cas12f-RKK在6个位点显示出超过80%的插入缺失(indel)效率,最高达到野生型的26倍。这意味着,仅需更低剂量的mRNA和gRNA,就能实现高效的基因编辑。
这项研究的意义不仅仅在于发现了一个新的酶,更在于它为基因治疗提供了一种“更小、更强”的工具箱:
AAV兼容性:Al3Cas12f及其变体尺寸极小(约400-500 aa),远小于SpCas9,非常适合单AAV载体递送,降低了免疫原性和毒性风险。
克服阈值效应:工程化变体解决了野生型酶活性不足的问题,克服了“效力阈值”,使得治疗性基因的敲除或插入成为可能。
结构生物学范式:该研究建立的Cas12f结构比较框架,为未来挖掘和优化更多微型编辑器提供了蓝图。
NATURE标准引用格式:
Guan, K., Ocampo, R.F., Carnevali, P.B. et al. Comparative characterization of Cas12f orthologs reveals mechanistic features underlying enhanced genome editing efficiency. Nat. Struct. Mol. Biol.(2026).
DOI: 10.1038/s41594-026-01788-6