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具备Phi29/Bst的强链置换酶活和Taq的热稳定性,可耐受93℃高温。
*若您需要这支酶的表达载体和菌株,可以联系我们。
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包装内容:
产品编号 | 产品名称 | 包装 |
P2024 | Hi-SD polymerase (50U/μl) | 2000U |
B2024 | 10X Hi-SD PCR Buffer | 1ml |
K1015 | MgCl2 (100mM) | 1ml |
K1002 | dNTP (10mM each) | 150μl |
B1001 | 6X DNA Loading Buffer | 1ml |
产品简介:
基于Taq聚合酶的基因工程酶,同时具备Phi29/Bst的强链置换酶活和Taq的热稳定性,可耐受93℃高温。
具有5'-3'聚合酶活性、5'-3'链置换活性,无外切酶活性,扩增速度2kb/min。
适用于热变性PCDR (Polymerase Chain Displacement Reaction)、LAMP反应、长片段扩增、富含GC片段扩增,还可用于全基因组测序(WGA)、单细胞测序和NGS建库。
于70℃,30分钟内将10 nmol脱氧核苷酸掺入到酸不溶性物质所需的酶量定义为1个活性单位(U)。
使用说明:
反应体系:解冻并彻底混匀各组分,于冰浴设置如下反应体系。
Component | 50μl reaction | Final Concentration | |
10X Hi-SD PCR Buffer | 5μl | 1X | |
10mM dNTPs | 1.75μl | 350µM | |
100mM MgCl2 | 1.5μl | 3mM | |
10µM Forward Primer | 2μl | 0.2µM (0.05~1µM) | |
10µM Reverse Primer | 2μl | 0.2µM (0.05~1µM) | |
Template DNA | xμl | Genomic DNA | 0.1–1μg |
plasmid or viral DNA | 0.1–10ng | ||
cDNA | 1-5μl | ||
Taq DNA Polymerase (5U/μl) | 0.25-0.5µl | 1.25-2.5units/50µl PCR | |
Nuclease-free water | Up to 50µl |
设置如下热循环程序,开始PCR反应。
Step | Temp. | Time | |
Initial Denaturation | 92°C | 1min | |
30 Cycles | Denaturation | 92°C | 30s |
Annealing | 45-68°C, Tm-5℃ | 30s | |
Extension | 68°C | 2min/kb | |
Final Extension | 68°C | 5min | |
Hold | 4°C |
常见问题及建议
1. 严格设置阳性对照和阴性对照。
2. 引物设计
(1) 建议使用专业软件如Oligo或Primer,引物长度15-30碱基,GC含量40-60%,Tm值接近。
(2) 避免形成引物自身或引物间二聚体。
(3) 避免引物3’端连续3个及以上G或者C导致非特异性扩增。
3. 无产物
(1) 酶失活或未加入酶。
(2) 模板含有杂质,改善纯化方法。
(3) 蛋白酶/核酸酶污染,反应前体系95℃加热5-10分钟。
(4) 退火温度不佳,建议进行梯度退火PCR优化。
(5) 引物浓度太低,适当增加浓度范围0.05-1μM。
(6) 引物设计不佳,需要考虑GC含量、二级结构、二聚体、退火温度、长度、特异性等因素重新设计合成引物。
(7) 反应条件欠佳,适当优化Mg2+浓度,增加循环数。
4. 产物少
(1) 退火温度不佳,建议进行温度梯度PCR优化。
(2) DNA模板量太少,予以适当增加。
(3) PCR循环数不足,增加循环次数。
(4) 引物量不足,增加体系引物浓度。
(5) 延伸时间太短,适当增加延伸时间。
(6) 变性时间过长会导致DNA聚合酶失活,适当调整。
(7) DNA模板中存在抑制剂,确保DNA模板干净。
5. 非特异性扩增
(1) 引物浓度高,特异性差。重新设计合成或降低引物终浓度。
(2) 循环的次数过多。适当增加模板量,减少循环次数。
(3) 酶的用量偏高或酶的质量不好,降低酶量或使用高质量的聚合酶。
(4) 退火温度偏低,退火及延伸时间偏长。应提高退火温度,减少变性与延伸时间。
(5) Mg2+浓度不佳,适当进行梯度浓度PCR优化。
(6) 复制提前终止,当使用非热启动的聚合酶时常见;应在冰上准备反应或采用热启动聚合酶。
(7) 模板量过多,适当调整。
(8) 外源DNA污染,建议重新纯化。