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Pfusion-HF DNA Polymerase

Pfusion-HF DNA Polymerase

快速高保真聚合酶

*若您需要这支酶的表达载体和菌株,可以联系我们。

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快速高保真聚合酶

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-20℃储存,<0℃运输。

 

包装内容:

产品编号

产品名称

包装

P2004

Pfusion-HF DNA Polymerase (2U/μl)

200U

B2004

5X Pfusion-HF PCR Buffer

1ml

K1002

dNTP (10mM each)

150μl

B1001

6X DNA Loading Buffer

1ml

 

 

产品简介:

高效高保真的DNA聚合酶,错配率~2×10-6,保真度为Taq50倍;延伸速率2~4 kb/min

高稳健性,反应成功率极高,需要优化步骤最少。

适用于高保真PCR、克隆、长片段PCR、复杂模板PCR、制备测序模板、高通量PCR、微阵列、诱变PCR

高保真DNA聚合酶片段和DNA结合蛋白片段融合重组蛋白。

具有5′-3′DNA聚合酶和3′-5′核酸外切酶活性,产物为平滑末端。

74℃30分钟内将10 nmol脱氧核苷酸掺入到酸不溶性物质所需的酶量定义为1个活性单位(U)。

无外源核酸酶活性,无宿主DNA/RNA;蛋白纯度大于99%

 

 

使用说明:

反应体系:解冻并彻底混匀各组分,于冰浴设置如下反应体系。

Component

50μl reaction

Final Concentration

5X Pfusion-HF PCR Buffer

10μl

1X

10mM dNTPs

1μl

200µM

10µM Forward Primer

2.5μl

0.5µM (0.05~1µM)

10µM Reverse Primer

2.5μl

0.5µM (0.05~1µM)




Template   DNA

xμl

Genomic DNA  

0.1–1μg

plasmid or viral DNA

0.1–10ng

cDNA

1-5μl




Pfusion-HF DNA Polymerase

1µl

2U/50µl PCR

Nuclease-free water

Up to 50µl


 

 

 

设置如下热循环程序,开始PCR反应。



2-step


3-step

Step


Temp.

Time


Temp.

Time

Initial   Denaturation


98°C

30 s


98°C

30s








30 Cycles

Denaturation


98°C

10 s


98°C

10s

Annealing


---

---


Tm*

10-30s

Extension


72°C

15-30 s/kb


72°C

15-30s/kb








Final   Extension


72°C

5-10 min


72°C

5-10min

Hold


4°C



4°C


*Tm值计算工具参考www.thermofisher.com/tmcalculator

引物长度>20ntTm69°C或者引物长度20ntTm72°C考虑两步法扩增。

 

常见问题及建议

1.      严格设置阳性对照和阴性对照。

2.      引物设计

(1)    建议使用专业软件如OligoPrimer,引物长度20-40碱基,GC含量40-60%Tm值接近。

(2)    避免形成引物自身或引物间二聚体。

(3)    避免引物3’端连续的G或者C导致非特异性扩增。

(4)    注意rPhusion退火温度较高,可参考线上工具https://tmcalculator.neb.com/#!/mainwww.thermofisher.com/tmcalculator计算。

3.      产物少或无产物

(1)    使用新鲜的高质量dNTP

(2)    酶失活或未加入酶,适当增加酶的用量。

(3)    模板含有杂质,改善纯化方法;增加模板量。

(4)    增加延伸时间。

(5)    退火温度不佳,建议使用专业工具计算或者进行梯度退火PCR优化。

(6)    引物设计不佳,需要考虑GC含量、二级结构、二聚体、退火温度、长度、特异性等因素重新设计合成引物。

(7)    反应条件欠佳,适当优化Mg2+浓度,增加循环数。

(8)    对多数模板而言最佳变性温度为98℃或更高。

4.      非特异性扩增/产物弥散

(1)    提高退火温度。

(2)    缩短延伸时间。

(3)    减少酶的用量。

(4)    优化Mg2+浓度。

(5)    引物浓度高,特异性差。重新设计合成或降低引物终浓度。

(6)    减少循环次数。

(7)    适当调整模板量过多。

(8)    外源DNA污染,建议重新纯化。